在绝大多数药物作用靶点中，酶类靶点占据重要地位。本文以酶催化反应的基本化学原理为起点，系统概述并阐述酶学研究中的几个核心概念——Km、kcat 和 Ki 及其测定方法；进一步分析灵敏酶学筛选方法开发的关键步骤；并综述不同类型酶抑制剂的作用机制，以及在实验检测过程中各类抑制剂的 IC₅₀ 与 Ki 之间的关系。

酶是生命体内化学反应的生物催化剂，能够在生理温度和常压条件下显著加快化学反应速率。几乎所有细胞生命活动过程均依赖酶的参与以提高反应效率。特定酶活性或表达水平的异常（增强或缺失）均可能导致生理功能紊乱并引发疾病。因此，在药物研发过程中，酶不仅是重要的作用靶点，也是极具开发潜力和临床价值的靶点。

近年来，多种以酶为靶点的药物取得了显著的临床疗效。例如，吉利德公司在中国上市的慢性丙型肝炎治疗药物索华迪（索磷布韦），其靶点为 NS5B RNA 聚合酶，对 HCV 1、2、3 和 6 型具有显著抗病毒活性，治愈率可达 92%–100%；又如晚期结直肠癌的一线治疗药物伊立替康，其代谢活性产物 SN-38 是 DNA 拓扑异构酶Ⅰ抑制剂，通过稳定拓扑异构酶Ⅰ-DNA 复合物，引起 DNA 单链断裂，从而阻断 DNA 复制并抑制 RNA 合成，表现为细胞周期 S 期特异性毒性。

此外，首款获得 FDA 批准的双药 HIV 治疗方案 Juluca 中，Dolutegravir 为 HIV-1 整合酶链转移抑制剂（INSTI），而 Rilpivirine 则是一种 非核苷类逆转录酶抑制剂（NNRTI），两者协同作用显著提高了抗病毒疗效。

基于上述背景，如何建立一种简便、高通量且可靠的酶抑制剂筛选方法，成为本文重点探讨的问题。为此，本文将首先回顾酶催化反应的基本原理，并在此基础上展开对相关酶学参数及筛选方法的系统讨论。

绝大多数酶学反应可用如下的简化模型进行描述：

E 代表酶（enzyme），S 代表底物（substrate），P 代表反应产物（product）。ES 为酶与底物在催化反应开始前形成的中间复合物，即酶–底物复合物。E和S形成ES复合物的反应是可逆反应的过程，k1是E和S形成ES复合物的结合速率常数，相当于配体受体结合时的Kon或者Ka； k-1是ES解离形成E和S的解离速率常数，相当于配体受体结合时的Koff或者Kd（关于以上概念可参考笔者前期的文章--生物功能学筛选评价技术之亲和力评价篇）；ES解离形成E和P的过程在反应初期一般认为是不可逆的过程，反应产物E会被反应体系中的过量的S捕捉。k2是ES形成E和P的速率常数，也被称之为Kcat,相当于配体受体结合时的Kon或者Ka酶催化效率：

酶相对于其底物的催化效率通常用 kcat/Km 来表示。 一般而言，Km 值越小、kcat 值越大，催化效率越高。Km（米氏常数）值的化学本质是E和S可逆反应过程中的解离平衡常数KD,反映的是E和S亲和力的强弱，Km值越小亲和力越强，效率越高。Kcat值是ES解离形成E和P的速率常数。Km值和Kcat值测定

米氏方程描述了在稳态反应条件下酶催化反应中初始反应速度V和底物浓度 [S]的相关关系：

当V等于1/2的 Vmax时，底物浓度 [S]为Km值。

在实际的检测过程主要包括以下几个步骤：

1. 少量固定浓度的酶（nM或者pM级别），梯度浓度稀释的底物（底物浓度相对于酶浓度由远远过量，mM到μM）进行分组，酶催化反应；

2. 每个分组对酶催化反应的产物进行动力学检测（酶标仪进行荧光，吸光度检测或者HPLC检测），选取各分组信号时间的线性反应区域进行V计算；

3. 选取梯度浓度稀释的底物动力学检测的线性区域的斜率作为初始反应速度V进行数据米氏方程拟合，拟合图形的平台期为Vmax, 1/2的Vmax时V对应的底物浓度值是Km值。处理结果示意图如下：

4. 当酶催化反应达到最大速度时，S远远大于E，所以所有的E均被S捕获，E和S的逆反应速度可忽略不计，[ES]=[E]

Vmax=[ES]*Kcat=[E] *Kcat,所以Kcat= Vmax/[E]

以上是Km和Kcat的测定和计算过程，值得注意的是在实际的实验过程中需要注意以下几点：

1.必须是动力学读数，选取初始反映的线性段的斜率作为初始反应的速度。终点法读数的结果很多时候并不可靠，应为酶催化反应随着时间的进行底物的消耗，反应速度会从匀速到非均速变化，如果采用终点法可能得到不真实的初始速度，如下图：

2. 必须确认仪器的检测线性，当酶催化反应，产物的量过多时，超过仪器检测的线性区域时，检测的产物的量不准，影响到后续参数的计算，如下图：

酶学药物筛选模型的建立

酶学筛选方法的几个核心参数包括酶，反应环境，底物和抑制物。一般来讲反应环境需要查阅文献进行调研，确定PH值，离子强度，洗涤剂等对酶活的影响，底物可以根据酶催化原理选择天然底物，也可以选择合成底物（底物的选择和后续配套的检测方法紧密相关）。一个酶学方法的开发可能涉及到以下一些因素：

底物的选择和配套的检测方式，如下图某蛋白水解酶，其识别的位点是氨基酸线性表位，可以人工合成多肽，在其N端和C端分别加入荧光基团和淬灭基团，正常状态下或者酶活抑制状态，该多肽在酶标仪340nm激发时，其发射光会被淬灭基团吸收，在405nm无信号产生；酶催化反应会将该多肽剪切，当酶标仪340nm激发时，405nm有信号产生。 

又如某病毒逆转录酶，合成RNA模板和对应引物，在其引物上进行生物素标记，其中碱基上进行Ru标记，随着酶催化的逆转录反应的进行，引物上不断有Ru标记碱基上去形成核苷酸序列，通过亲和素的板子捕捉引物，检测Ru信号值来评判酶的催化和抑制的活性。

酶，底物浓度的选择和反应时间的选择

当酶对应的底物确定以后，选取少量的酶浓度（pM或者nM）对底物进行Km测定，选取底物的Km浓度作为筛选的反应浓度，选取该浓度下线性的反应时间内的某个时间点作为反应终止或者检测的时间。酶和梯度稀释的化合物进行预孵育后，加入Km浓度的底物，反应一段时间后进行检测，这个就是一般酶学筛选模型。

酶抑制剂机理研究

对于靶点酶的抑制剂，主要可以归纳为三类（Competitive竞争性, Noncompetitive非竞争性, Uncompetitive不竞争性）

Competitive竞争性抑制剂只和自由的酶结合，通常情况下和底物共同竞争结合位点（活性中心），当然也有竞争性抑制剂和底物互斥的情况出现，两个中只有一个能够和自由的酶结合。在竞争性抑制剂存在的情况下，酶相对于底物的Km和Vmax测定时，测得得表观Km值增加，Vmax值不变，如下图所示，几种竞争性抑制剂的图示： 

Noncompetitive非竞争性抑制剂

非竞争性抑制剂可以和自由的酶结合，也可以和酶-底物复合物结合，抑制剂结合的位点和活性中心位点不在相同的表位，最终也会导致酶催化活性的丧失。在非竞争性抑制剂存在的情况下，酶相对于底物的Km和Vmax测定时，测得得表观Km值不变，Vmax值降低，如下图所示：

Uncompetitive不竞争性抑制剂

不竞争性抑制剂只和酶-底物复合物结合，形成失活的抑制剂-酶-底物复合物。酶相对于底物的Km和Vmax测定时，测得得表观Km值降低，Vmax值降低。如下图所示：

不同类型抑制剂Ki和IC50之间的关联

Ki描述的是抑制剂和酶的结合强弱，是抑制剂和酶的解离平衡常数，是个状态函数，不会受到反应体系中底物浓度的影响，不同实验得到的Ki值具有可比性；而IC50则是在特定酶学检测方法中酶活抑制一半时抑制剂的浓度，根据不同类型的抑制剂，底物浓度可能对IC50产生影响，不同实验得到的IC50值不具可比性。根据不同类型的抑制剂，在理想条件下（酶浓度远远小于底物浓度进行反应），Ki和IC50的关系如下：

不同抑制剂类型IC50和反应体系中加入的底物浓度的关系示意图如下： 

展望：

绝大多数生命活动的调控均是有酶的参与，对酶的选择性抑制可以调控细胞的增殖、分化、凋亡以及免疫调节等许多重要的生物学过程，如JAK抑制剂，IDO抑制剂等在临床研究或者市场上证明了其价值或者潜在的价值。了解酶学反应的化学原理，搭建合适的酶学筛选模型；表征酶抑制剂的不同抑制机理，也有助于细微区分不同抑制机理药物可能起到的差异性的临床获益。

利用酶催化反应进行体外的功能学检测也是常用的工具，如ELISA中HRP酶的催化显色，细胞活性检测时琥珀酸脱氢酶催化的CCK8检测，报告基因检测过程中luciferase酶催化的化学发光等，了解其化学原理和动力学反应进程有助于功能学方法学开发，优化检测方法的条件。

酶催化反应是理解体外生物功能学评价体系承上启下的一环，此反应过程描述了是从Binding(affinity)转换到function（potency）的过程，且在理想条件下此过程是线性传递的，即产物生成量是ES的量和Kcat的乘积，Vp=[ES]*Kcat。与之相对的，蛋白相互作用过程中，只有Binding(affinity)，大部分受体介导的细胞学效应既有Binding(affinity)，也有function（potency），但是由Binding(affinity)到function（potency）之间的传递往往是非线性的，每种细胞由于其细胞内环境蛋白的表达差异性会导致由胞外结合引起的刺激非均一放大形成差异性效用。下一篇笔者将会对更为复杂的细胞学相关测定方法进行讨论。

参考资料

《Guidance for Assay Development & HTS》

SECTION V: ENZYMATIC ASSAYS

SECTION XII: MECHANISM OF ACTION ASSAYSFOR ENZYMES